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遠(yuǎn)慕生物:簡單介紹幾種抗原修復(fù)法
點擊次數(shù):1220 更新時間:2019-10-11

抗原修復(fù)就是利用虎穴試劑盒熱的作用將抗原重新暴露出現(xiàn)或修正過來的過程。

常用抗原修復(fù)法介紹:

1. 真空負(fù)壓抗原修復(fù)法:

① 切片脫蠟至水。

②0.3%H2O2甲醇真空負(fù)壓處理5分鐘。

③自來水洗,蒸餾水洗。

④0.01M檸檬酸鹽緩沖液(PH6.0),真空負(fù)壓干燥箱預(yù)先調(diào)至95℃,真空負(fù)壓處理10分鐘。

⑤待修復(fù)注降至室溫的一,PBS洗3次,隨后按選好的年免疫組化染色方法進(jìn)行染色。這是一種操作簡單,效果特佳,溫度恒定,能一次性處理大量切片的方法。

2.微波輻射抗原修復(fù)法:

①切片脫蠟至水。

②0.3%H2O2甲醇處理10分鐘。

③自來水洗,蒸餾水洗。

④ 0.01M檸檬酸鹽緩沖液(PH6.0),于微波爐內(nèi)微波輻射10分鐘,如檢測Er和Pr則需要20輻射分鐘左右。

⑤待修復(fù)液降至室溫后,PBS洗3次,隨后按選好的免疫組織化學(xué)的染色方法進(jìn)行染色。

3.高壓抗原修復(fù)法:

①切片脫蠟至水。

②0.3%H2O2甲醇處理切片10分鐘。

③自來水洗,蒸餾水洗。

④切片放入抗原修復(fù)液中,邊同容器放入高壓鍋中加熱至沸騰。蓋上壓力閥至噴汽后持續(xù)1-4分鐘。

⑤待修復(fù)液恢復(fù)至室溫后,PBS洗3次,隨后按選好的免疫組織化學(xué)染色方法進(jìn)行染色。

4.隔水熱抗原修復(fù)法:

①切片脫蠟至水。

②0.3%H2O2甲醇處理切片10分鐘。

③自來水洗,蒸餾水洗。

④切片放入0.01M檸檬酸鹽緩沖液(PH6.0)中,邊同容器一起放入水溶鍋中加熱,其間應(yīng)不斷用溫度計測其溫度,待抗原修復(fù)液的溫度達(dá)到有效溫度后(92℃↑)。即開始計時,持續(xù)40分鐘。⑤待抗原修復(fù)液恢復(fù)至室溫后,PBS洗3次,隨后按選定好的免疫組化染色方法進(jìn)行染色。

5.電爐加熱抗原修復(fù)法:

①切片脫蠟至水。

②0.3%H2O2甲醇處理切片10分鐘。

③自來水洗,蒸餾水洗。

④ 將切片放入抗原修復(fù)液中于電爐上加熱,不時用溫度計測量溫度,當(dāng)達(dá)92℃后,即可拔離電源,當(dāng)溫度低于92℃時,再插上電源,如此反復(fù)持續(xù)至10分鐘左右。

⑤待抗原修復(fù)液降至室溫后,PBS洗3次,隨后按選定的免疫組化染色方法進(jìn)行染色。對各種抗原修復(fù)方法的評價。

抗原修復(fù)的方法選擇:

抗原修復(fù)關(guān)系到組織抗原能否暴露充分,這對免疫組化染色效果有很大影響。不適當(dāng)?shù)目乖迯?fù)方式會導(dǎo)致染色弱陽性。因此應(yīng)當(dāng)根據(jù)不同的抗原特點,采用不同的修復(fù)方法。不適當(dāng)?shù)目乖迯?fù)方式會導(dǎo)致染色弱陽性。因此應(yīng)當(dāng)根據(jù)不同的抗原特點,采用不同的修復(fù)方法。對某些細(xì)胞內(nèi)抗原(如Fas、Bax、FⅧ等)和細(xì)胞間質(zhì)抗原(如Laminin、CoIV等)則需要用酶消化法處理切片。用于IHC消化的酶很多,所選酶的種類,使用的濃度,PH值,消化時間及溫度等均要視組織固定的不同,所檢測抗原的性質(zhì)、組織類型的不同而異,應(yīng)通過預(yù)實驗摸索定。使用酶消化的原則:胰蛋白酶和蛋白酶K一般用于細(xì)胞內(nèi)抗原,如Keratin,CEA,GFAP等。一般說來,胰蛋白酶消化能力較胃蛋白酶弱,主要用于細(xì)胞內(nèi)抗原的消化,胃蛋白酶主要用于細(xì)胞間抗原的消化,如fibronectin,Laminin,各型膠原等。消化時間和組織固定的長短呈正比。在用酶消化,熱修復(fù)后均不能獲得結(jié)果的前提下使用抗原修復(fù)與酶消化結(jié)合的方法,有時會取得較為滿意的結(jié)果。一般蛋白酶K和微波相結(jié)合,但應(yīng)注意,可能檢測的抗原無論何種性質(zhì)均會在核內(nèi)出現(xiàn)假陽性反應(yīng)。以高壓加熱方法、微波加熱方法較為穩(wěn)定,?高壓加熱方法效果優(yōu)于微波加熱方法和單純加熱方法。溶液的濃度對修復(fù)效果無任何影響,而PH值則影響較大。緩沖液以檸檬酸緩沖液和Tris-HCL較常用。

免疫組化抗原修復(fù)法的注意事項:

1、pH的應(yīng)用范圍及選擇抗原修復(fù)液的pH非常重要,有效的抗原修復(fù)pH要比修復(fù)液的化學(xué)成分更重要,同樣的修復(fù)液隨著pH的升高染色的強度逐漸增強,但jiapH范圍為6.0-10.0。目前大家*的hao的抗原修復(fù)液是pH6.0的檸檬酸鹽緩沖液和pH8.0的EDTA緩沖液。作為通用修復(fù)液堿性pH的修復(fù)液要比酸性的有效,而對固定很長時間舊的存檔組織,酸性pH的修復(fù)液則優(yōu)于堿性的修復(fù)液。

2、抗原修復(fù)時應(yīng)選擇jia溫度70-90℃的溫度對未經(jīng)固定的蛋白質(zhì)可發(fā)生變性,但經(jīng)福爾馬林固定的蛋白質(zhì),溫度必須達(dá)到92℃以上方能使其變性。研究結(jié)果顯示,溫度為92-98℃是合適的,95℃效果hao。

3、抗原修復(fù)液必須遵循自然降溫規(guī)律,否則效果不好或達(dá)不到抗原修復(fù)的目的抗原修復(fù)持續(xù)時間過后,取出放于室溫中讓其慢慢地降溫,不能為了爭取時間,強行用冰塊或冷水使其降溫。這是因為當(dāng)高溫中的抗原蛋白分子鏈脫離了其他的束縛或聯(lián)結(jié),要有一個自然環(huán)境讓其自然放松下來,隨著溫度的降低,它們會慢慢地恢復(fù)原來的形態(tài)和構(gòu)型。

4、盡量使用足量的抗原修復(fù)液應(yīng)用于抗原修復(fù)的液體,一定要充足,防止切片干涸。應(yīng)用大量的抗原修復(fù)液時,由于它的量較大,可延緩液體的沸騰時間,增加切片受微波輻射的量,對抗原修復(fù)將達(dá)到*。

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